クロマトグラフィー

逆相HPLCカラム

逆相HPLCカラムは、C18などのアルキル鎖固定相と水/有機溶媒グラジエントで成分を疎水性の差により分離・分取するカラムです。オリゴ核酸やペプチドの純度分析、不純物(n-1等の類縁体)分離、原薬の精製分取に使われ、固定相化学・粒子径・細孔径・分取スケールを軸に選定します。

逆相分離C18/C8/C4イオンペア法分取/分析オリゴ核酸・ペプチド
分類
クロマトグラフィー
主な用途
逆相分離 / C18/C8/C4 / イオンペア法 / 分取/分析 / オリゴ核酸・ペプチド
関連モダリティ
核酸医薬(siRNA/ASO) / ペプチド医薬 / mRNA医薬 / 低分子医薬(API) / 抗体・タンパク質
代表メーカー
Waters・Agilent・Thermo Fisher Scientific・Phenomenex ほか計6社
関連キーワード
逆相クロマトグラフィー / C18 / オリゴ核酸 / ペプチド / イオンペア法 / 純度試験

用途・特徴

逆相HPLCカラムは、シリカやポリマー粒子表面に結合させたC18・C8・C4などのアルキル鎖を固定相とし、疎水性相互作用の差で成分を分離します。移動相は水系とアセトニトリル/メタノール等の有機溶媒の混合で、有機溶媒比を上げて溶出させます。オリゴ核酸ではイオンペア試薬(TEAA等)、ペプチドではTFA/ギ酸を移動相に加えて保持と選択性を調整するのが一般的です。

選定軸は主に固定相化学(C18/C8/C4・エンドキャップ・ポーラー埋め込み)、粒子径と細孔径、カラム内径・長さ(分取スケール)、ハードウェア材質です。低分子・短鎖ペプチドは80〜120Åの汎用C18、長鎖オリゴや大きいペプチド/タンパク質は分子サイズに合わせた広細孔(200〜300Å)C4〜C8を選びます。分析は小粒子・小内径で高分離、分取は大内径・大粒子で負荷量と回収を優先します。

工程設計では、分析メソッドと分取メソッドの整合(スケールアップ時の保持・選択性の一致)が重要です。同一固定相系で内径と充填量をスケールアップし、線速度・グラジエント勾配を相似的に設計します。金属配位しやすいリン酸基を持つオリゴ核酸では、金属イオンによるピーク劣化を避けるためバイオイナート/PEEK流路や金属不活性化カラムが望まれます。

Point
  • C18/C8/C4等のアルキル鎖を固定相とし、疎水性の差で分離・分取する
  • 移動相は水系+有機溶媒(ACN/MeOH)のグラジエントで溶出
  • オリゴ核酸はイオンペア試薬(TEAA/HFIP-TEA)、ペプチドはTFA/ギ酸を添加
  • 固定相鎖長・細孔径・粒子径・カラム寸法が主な選定軸
  • 長鎖オリゴ・大型ペプチドは広細孔(200〜300Å)C4〜C8が有利
  • 分析(小粒子・小内径)と分取(大内径・高負荷)でスケールを使い分け
  • リン酸骨格の金属配位対策にバイオイナート/PEEK流路や不活性化カラムが望ましい
  • LC-MS連結時は揮発性イオンペア・低TFAで脱塩・質量確認に対応

使用方法

代表的な流れは、対象分子に合う固定相と細孔径を選び、移動相・イオンペア条件とグラジエントを設計してシステム適合性を確認し、試料を分離・分取して純度を評価する手順です。

1対象分子(オリゴ/ペプチド等)と分子サイズを整理
2固定相(C18/C8/C4)・細孔径・粒子径を選定
3移動相・イオンペア試薬・グラジエント条件を設計
4システム適合性(分離度・対称性)を確認
5試料を負荷し分離・必要に応じ分取
6純度・類縁体を積分しLC-MSで同定・裏取り
実際の条件は、対象分子の鎖長・疎水性、固定相化学、移動相のpHとイオンペア試薬、グラジエント勾配、カラム温度、検出波長(核酸はUV260nm、ペプチドはUV214/220nm)、装置の流路材質によって変わります。分取では負荷量・回収率・溶媒消費とのバランスを取ります。

掲載情報の確認日:2026年7月(メーカー公開情報をもとに編集部が確認。最新・正確な仕様は各社公式をご確認ください)