捕捉：プロテインA
培養液から一気に純度を上げる抗体のFc領域に特異的に結合するプロテインAは、1ステップで高い純度と回収を得られる捕捉の主役。Fcを持たないフラグメントなどにはプロテインL/Gが候補になります。
注意：溶出は酸性のため、直後の低pHウイルス不活化や、浸出プロテインAの管理を工程で織り込みます。
選び方 — Antibody Purification
抗体精製クロマトグラフィーの選び方
捕捉から研磨まで、どのレジンを・なぜ選ぶか？
抗体のダウンストリームは、プロテインAで捕捉し、イオン交換や疎水などで研磨（ポリッシュ）して不純物を分ける流れが定番です。各段でどのカテゴリのレジンを見るか、なぜその順番か、そしてどの分析で純度を確かめるかを、意思決定の順路として整理します。
抗体（mAb）の精製は、捕捉（キャプチャー）→ 中間・仕上げ（ポリッシュ）という段階で組み立てます。プロテインAで一気に純度を上げ、その後のイオン交換や疎水クロマトで、凝集体・宿主細胞タンパク質（HCP）・電荷異性体などの残りを削っていく——各段は目的が違うので、レジンも分けて選びます。
選ぶときに見る軸
工程の段階捕捉（プロテインA）か、研磨（AEX／CEX／HIC／マルチモーダル）か。段階で見るカテゴリが変わる。
分ける相手凝集体・HCP・電荷異性体・DNA・浸出プロテインAなど、落としたい不純物で手法を選ぶ。
結合モードフロースルー（目的物は素通し、不純物を捕まえる）か、結合・溶出か。
生産性動的結合容量（DBC）・流速・耐アルカリCIP性・寿命。連続化（マルチカラム）の可否。
選択肢と、なぜそれを選ぶか
研磨：陰イオン交換（AEX）
DNA・HCP・ウイルスをフロースルーで除く中性〜弱塩基性条件で、負に帯電したDNA・一部HCP・ウイルスを捕まえ、目的の抗体は素通し（フロースルー）させる研磨の定番。メンブレン型なら高流速で使い捨てやすいのも利点です。
研磨：陽イオン交換（CEX）
凝集体・電荷異性体・残存HCPを分ける結合・溶出モードで、凝集体や電荷異性体、残ったHCP・浸出プロテインAを分離する仕上げの要。プロテインA後の中間研磨としても、最終研磨としても使われます。
研磨：疎水・マルチモーダル
凝集体除去をもう一段強める疎水性相互作用（HIC）やマルチモーダル（複数の作用を併せ持つ）レジンは、イオン交換だけでは分けきれない凝集体や近接不純物を、別の物差しで削るための選択肢です。
サイズで分ける・仕上げ
凝集体や低分子を大きさで分離サイズ排除（SEC）は分子の大きさで分ける手法。分取では収量とのバランスから限定的に使われますが、凝集体の確認・仕上げの選択肢として押さえておきます。
セットで見る分析・品質試験
この判断を支える解説記事
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