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ホーム/解説記事/核酸医薬
核酸医薬応用・分析シリーズmRNAと核酸の品質分析8/8実務

mRNAのキャップ効率は、なぜ測るのに半日かかっていたのか

Proglenth 編集部公開 2026-09-14更新 2026-10-24約5分で読めます
mRNAのキャップ効率は、なぜ測るのに半日かかっていたのか

mRNAのキャップ効率とは、mRNAの5′末端に、細胞に読ませるための目印(キャップ)が付いている分子の割合です。付いていない分子は翻訳されにくく、免疫の反応も招くため、mRNA医薬では重要な品質特性として測ります。

ただし、標準的な測り方は、試料の準備から結果まで4〜6時間かかっていました。2026年にVaccines誌に出た論文は、この全工程を1.5時間未満に縮めたと報告しています。

どこを省いて短くしたのか、省いたぶんを何で埋めたのか、自社の構築物で同じようにできるかを確かめる点を説明します。

この記事の要点
  • 時間がかかっていた理由⁠:切り出した断片を磁気ビーズで拾う精製と、熱でほどいてから冷まして切る往復に、手間と時間がかかっていたからです。
  • 論文が短くした方法⁠:熱に強い酵素でほどくと切るを一度にまとめ、精製を省いて、そのまま測定にかけました。
  • 確かめること⁠:精製を省いても、規格の線に近い量の少ないキャップなしの成分まで読めるかです。
この記事で読む論文Rapid LC-MS Quantification of mRNA Vaccine Capping Efficiency via High-Specificity RNase H Cleavage and Metal Adduct Suppressed ChromatographyVaccines・2026

1. キャップ効率は、どうやって測っているのか

mRNAの5′末端のキャップを含む短い断片だけを酵素で切り出し、その断片の質量を、液体クロマトグラフィー固定相と移動相の間での物質の相互作用(分配・吸着・イオン交換など)の差を利用して、混合物中の成分を分離・精製する操作の総称。詳しく →と質量分析をつないだ装置(LC-MS液体クロマトグラフで成分を分離したうえで質量分析計にかけ、分子量を測って物質の同定や定量を行う手法です。詳しく →)で読んで、キャップの付いた分子の割合を出します。

mRNAは数千塩基の長い分子なので、そのままでは末端の違いを質量では読み分けられません。そこで、切りたい位置に合うDNAのプローブを貼り付け、DNAとRNAが対になった所だけを切るRNase HDNAとRNAが対合した二本鎖のRNA鎖を選択的に切断する細胞内酵素。ギャップマー型ASOの分解作用を担う。詳しく →という酵素で、5′末端の断片を切り出します。

切り出した断片を、この装置で測ると、キャップの付いた断片と付いていない断片が別の質量として出てきます。その面積の比が、キャップ効率です。基本の流れはキャッピング効率の測り方で説明しています。

2. なぜ、全工程で4〜6時間もかかっていたのか

切り出した断片を磁気ビーズで拾う精製と、mRNAの折りたたみを熱でほどいてから冷まして切るという往復に、時間がかかっていたからです。

mRNAは自分で折りたたまれて、切りたい位置がプローブと対になりにくくなります。そのため、いったん高温でほどき、酵素が働く温度まで冷ましてから切る、という手順が要りました。

切ったあとは、ビオチンを付けたプローブごと磁気ビーズで断片を拾い、残りの全長や酵素を落としてから測定にかけます。この操作は装置に入れる余計なものを減らせる一方で、手作業が増え、断片の取りこぼしや、人による差が入り込みます。

上下2段の図。上は従来の流れで全工程4〜6時間。熱でほどいて冷ましてから切り、RNase Hで5′末端の断片を切り出し、ビーズで拾う工程で手作業と取りこぼしが起き、LC-MSで断片の質量を読む。下は論文の流れで全工程1.5時間未満。熱に強い酵素でほどくと切るを一度に行い、プローブを作り直して切断の特異性を98%以上にし、精製を省いてそのまま注入し、イオンペア条件で金属の付着を抑える。下に、ピークが1本にまとまると、量の少ないキャップなしの成分も読み取りやすくなると書かれている。
従来の流れと、論文が替えた所(概念図)
図をダウンロード(会員・無料)

3. 論文は、どこを替えて1.5時間未満にしたのか

熱に強いRNase Hでほどくと切るを一つの工程にまとめ、断片の精製を省いて、そのまま測定にかけました。

熱に強い酵素なら、高温でmRNAがほどけた状態のまま切れるので、冷ます往復が要りません。精製を省けば、ビーズの操作にかかる時間と、取りこぼしの不確かさもなくなります。

ただし、精製を省くと、切り出した断片のほかに、残りの全長、プローブ、酵素、緩衝液溶液のpHを一定範囲に保つために使用される弱酸と共役塩基の混合溶液。詳しく →の塩が混ざったまま装置に入ります。そこで論文は、ガイドになるDNAプローブを設計し直し、狙った位置だけを切る特異性分析法において、共存する不純物・分解物・添加剤などが存在しても目的成分だけを正確に測定できる能力。詳しく →を98%以上にしたうえで、分離の条件にも手を入れました。⁠省いた工程のぶんを、切断の精度と装置側の分離条件で埋めた、という組み立てです。

4. 混ざったままの試料を、装置はどう読み分けるのか

イオンペア試薬オリゴ核酸などの分析で、逆相カラムへの保持を高めて分離を良くするため移動相に加える試薬です。詳しく →を使う分離の条件を詰めて、ピークが複数に割れる原因になる金属イオンの付着を抑えました。

RNAは、リン酸の部分にナトリウムやカリウムのイオンが付きやすく、そのままでは同じ分子が質量の少しずつ違う複数のピークに割れて見えます。ピークが割れると1本あたりの高さが下がり、もともと量の少ない成分は、ほかのピークの裾に埋もれます。

イオンペア試薬は、RNAのリン酸と対になって金属イオンの付着を防ぐ試薬です。ピークが1本にまとまれば、キャップの付いていない少量の成分も読み取りやすくなります。

論文では、キャップのない物質を1%から50%まで5段階で混ぜた試料を測り、ほとんどの水準でばらつきは10%未満でした。外れたのは、混ぜた量がもっとも少ない水準です。

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LC-MS→

5. 自社に入れる前に、量の少ない不純物まで読めるかを確かめる

規格の線は「キャップあり95%以上」のように高い側に引かれるため、精製を省く方法の価値は、量の少ないキャップなしの成分まで安定して読めるかで決まります。

論文で外れたのも、いちばん少なく混ぜた水準でした。自社の構築物で、規格の下限に近い少なさまで読めるかを確かめないと、数字を判定に使えません。

見分けにくい構造がある

キャップには、メチル基が1つ違うだけの種類(Cap 0グアニンのN7だけがメチル化されたキャップ構造。免疫回避は不十分なことがある。詳しく → と Cap 1Cap 0に加え隣接塩基の2'-O位もメチル化した、自然免疫回避に有利なキャップ。詳しく →)があり、質量の差はわずかです。逆向きに入ったキャップは、正しい向きと質量が同じで、質量だけでは見分けられません。自社の構築物で、これらをこの条件で分けられるかを確かめます。

構築物が変われば、切れる位置も変わる

論文は、複数の製造元のmRNA原薬原薬。精製を終えた有効成分そのもので、製剤化する前の段階を指す。詳しく →にも当てはめ、配列やキャップの付け方の違いに強いと述べていますが、回収率と精度を詳しく調べたのは、1つの構築物から切り出した長さの違う2種類の断片(15塩基と25塩基)です。配列・長さ・修飾塩基の種類が変われば、プローブが貼り付く位置も断片の質量も変わります。論文も、従来の方法の課題として、標的の配列によって保持時間や分離、検出の限界が揺れることを挙げています。

時間は自社の試料数で測り直す

1.5時間未満は、論文の条件での全工程の時間です。試料の数が増えれば準備も装置の時間も積み上がるため、自社の試料数と装置で測り直します。

6. 導入するときは、従来法としばらく並べて測る

測り方を替えるときは、同じロットを従来法と新しい方法の両方で測り、数字が動いた原因を切り分けられるようにします。

キャップ効率が下がったときに、製造が変わったのか測り方が変わったのかが分からなくなると、原因を追えません。次の順に確かめます。

  • 時間⁠:報告された時間は試料の準備から結果までの全工程か。解析を含めた自社の所要時間を測ったか。
  • 分離⁠:精製を省いても、自社の構築物で、切り出した断片のピークがほかの成分と分かれているか。
  • 内訳⁠:Cap 0、Cap 1、キャップなしの内訳を出せるか。逆向きのキャップをどう扱うか。
  • 少量の読み取り⁠:キャップのない試料を混ぜた試験で、規格の下限に近い少なさまで読めることを確かめたか。
  • 装置の共用⁠:イオンペア試薬を使う条件は、ほかの分析と装置を共用できるか。感度や洗浄への影響を見たか。
  • 並行測定⁠:同じロットを従来法と並べて測り、同じ値が出ることを確かめたか。

測る手段は、製品データベースのLC-MS(液体クロマトグラフィー質量分析)とmRNAのキャップ/ポリA・完全性評価で比べられます。キャップの付け方そのものはmRNAのキャッピングで説明しています。

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参考文献

  • Yang R, Wu X, Zhang X, Fu S, Gu K, Lv Z, Li X, Mao Q. Rapid LC-MS Quantification of mRNA Vaccine Capping Efficiency via High-Specificity RNase H Cleavage and Metal Adduct Suppressed Chromatography. Vaccines (Basel). 2026;14(7):581. DOI: 10.3390/vaccines14070581(切断の特異性98%以上、熱に強いRNase H、精製の省略、全工程4〜6時間から1.5時間未満、イオンペア条件による金属アダクトの抑制)
  • Beverly M, Dell A, Parmar P, Houghton L. Label-free analysis of mRNA capping efficiency using RNase H probes and LC-MS. Anal Bioanal Chem. 2016;408(18):5021-5030.(ビオチン付きプローブとRNase Hで切り出す標準的な方法)
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シリーズmRNAと核酸の品質分析8 / 8 本目
このシリーズの最後の記事です。ほかの主題のシリーズも、入門の記事から順に読めます。シリーズの一覧へ →
  1. 1核酸医薬の品質管理とは? 純度の上限を決めるもの、Q6B に足す項目
  2. 2A260/A280とは?比が1.8でも純度は言えない理由
  3. 3mRNAのキャッピング効率の測り方と、数字の読み方
  4. 4ポリAテールの分析法と規格:なぜ平均長だけでは管理できないのか
  5. 5自動電気泳動でmRNAの完全性を測る:RQNだけで合否を判定しない理由
  6. 6イオン対逆相HPLC(IP-RP-HPLC)でmRNAの純度を測る:見えるものと見えないもの
  7. 7mRNAのキャップ率をLC-MSで測るとは?同じ酵素でも88〜98%と幅が出るのはなぜか
  8. 8mRNAのキャップ効率は、なぜ測るのに半日かかっていたのかいま読んだ記事

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この記事の目次
  1. 1. キャップ効率は、どうやって測っているのか→
  2. 2. なぜ、全工程で4〜6時間もかかっていたのか→
  3. 3. 論文は、どこを替えて1.5時間未満にしたのか→
  4. 4. 混ざったままの試料を、装置はどう読み分けるのか→
  5. 5. 自社に入れる前に、量の少ない不純物まで読めるかを確かめる→
  6. 6. 導入するときは、従来法としばらく並べて測る→
  7. 参考文献→
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  • キャップ効率は、もともとどう測るのか?キャッピング効率の測り方 →
  • キャップは、どの方式で付けるのか?mRNAのキャッピング →
シリーズ8 / 8
mRNAと核酸の品質分析
  1. 1核酸医薬の品質管理とは? 純度の上限を決めるもの、Q6B に足す項目
  2. 2A260/A280とは?比が1.8でも純度は言えない理由
  3. 3mRNAのキャッピング効率の測り方と、数字の読み方
  4. 4ポリAテールの分析法と規格:なぜ平均長だけでは管理できないのか
  5. 5自動電気泳動でmRNAの完全性を測る:RQNだけで合否を判定しない理由
  6. 6イオン対逆相HPLC(IP-RP-HPLC)でmRNAの純度を測る:見えるものと見えないもの
  7. 7mRNAのキャップ率をLC-MSで測るとは?同じ酵素でも88〜98%と幅が出るのはなぜか
  8. 8mRNAのキャップ効率は、なぜ測るのに半日かかっていたのか
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  1. 1. キャップ効率は、どうやって測っているのか→
  2. 2. なぜ、全工程で4〜6時間もかかっていたのか→
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編集メモ:この記事は Proglenth 編集部が、規制文書・論文・メーカーの公開資料をもとに整理した一般的な解説です。実際の製造方法・管理戦略・品質基準は、製品や企業、各国の規制によって異なり、特定製品の推奨や規制・医療上の助言ではありません。実務で判断するときは、薬局方・ガイドライン(ICH・GMP など)やメーカーの一次情報を確かめてください。誤りやご指摘はお問い合わせからお知らせください。

Proglenth(proglenth.com) https://www.proglenth.com/article/mrna-capping-efficiency-lcms-paper

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